Le système confocal TCS SP8 CSU MP FLIM est d’une conception ouverte permettant de larges utilisations pour de multiples projets. Il est versatile et d'utilisation conviviale. Cet équipement est dédié à l'imagerie multi-photonique et confocale de l'animal vivant. Il permet de réaliser de l'imagerie spectrale, de l'imagerie de durée de vie de la fluorescence (FLIM) sous excitation bi- photonique et des expériences de fluorescence recovery after photobleaching (FRAP).
Le système bénéficie d’une avancée technologique qui nous assure entre autres :
Le système bénéficie d’une avancée technologique qui nous assure entre autres :
- un système biphotonique pour couvrir tous les besoins en microscopie biphotonique.
- un système confocal sans aucun filtre d’émission pour une sensibilité accrue et une grande souplesse d’utilisation.
- un système clé en main avec le pilotage du laser à impulsions
- un système de mesure de temps de vie (FLIM) entièrement intégré dans le logiciel pour une plus grande souplesse et une facilité d’utilisation.
- un système compact et fiable grâce à la présence de lasers solides uniquement
- un système souple de haute sensibilité pour optimiser les expériences.
- un système convivial orienté multi-utilisateurs pour une mise en service et un temps de formation plus rapide.
- un système de contrôle et d’intervention à distance pour une meilleure fiabilité du système.
 | Un laser infrarouge pulsé femtoseconde (type Titane:Saphir) accordable (690-1040 nm) avec système de précompensation automatique de la dispersion de la largeur temporelle de l’impulsion est relié à ce microscope. La durée de l’impulsion de ce laser est inchangeable pour toutes les longueurs d’onde avec une durée avoisinant les 70 fs, une cadence de répétition des impulsions d’au moins 80 MHz et une puissance moyenne de 2.5 W à 800 nm. La source laser est complètement intégrable et pilotée automatiquement par un système d’interfaçage électronique et le logiciel du microscope.
|
|---|---|
DM600 CFS  | Microscope droit « Fixed Stage » entièrement automatisé et motorisé
|
|---|---|
Scanning stage XY | Platine motorisée en XY
|
Objectifs |
|
Dodt contraste  | Gradient de contraste
|
Fentes spectrales prisme  | Aucun filtre d’émission Non dépendant de la polarisation Précision des fentes au nm près Possibilité de s’affranchir du cross-talk Compatible avec tous les fluorophores du marché et les futurs
|
|---|---|
Scanner FOV  | Scanner Field Of View d’un champ de 22mm
Haute résolution (point par point) Haute vitesse de balayage 7 im/s par fluorophore
|
Scanner TAMDEM | Scanner conventionnel + scanner rapide Haute résolution (point par point) Haute vitesse de balayage 40 im/s par fluorophore Compatible avec l’utilisation d’un laser IR
|
Détecteurs NDD  | 2 détecteurs HyD NDD (45% d’efficacité quantique) situés au plus près de l’objectif avec capacité de temps de vie de fluorescence |
FLIM | TCSPC Module PicoHarp 300 pour l’acquisition de données FLIM incluant l’option TTTR et la corrélation en temps réel on-line Station SMD avec logiciel d’acquisition et d’analyse des données FLIM « SymPhoTime » |
EOM + Lambda/2 | Modulation de la puissance par combinaison d’un EOM et d’une lame Lambda/2
|
Station d'acquisition | Station informatique d’acquisition répondant à tous les besoins d’une plateforme (Écran 30") Station de hautes performances et complète pouvant être mise en réseau |
|---|---|
Logiciel d'acquisition | Logiciel intuitif et convivial parfaitement adapté à une plateforme Solution clé en main (pour le confocal et l’IR)
|
Licences supplémentaires |
|
Personnels et intervenant de la plateforme :
- Responsable scientifique : Darine ABI HAIDAR
- Personnel technique : Isabelle GARCIN
